ПО СРЕДУ

ПО СРЕДУ pos gosuslugi

Необходимая
плотность сред создается добавлением
к жидким средам 2-3% агара (агар-агар
состоит из полисахаридов, получаемых
из морских водорослей), обладает
способностью растворяться при 100°С и
застывать при комнатной температуре,
создавая консистенцию геля.

Соседние файлы в предмете Микробиология

ХарактеристикиОписаниеДругое оборудование
Oxoid (Thermo Fisher Scientific)Каталожный номер CM0055TОснова кровяного агара – Blood Agar Base

Для 125 л среды
Описание
Основа крояного агара – это неселективная среда общего назначения, широко используемая для роста патогенных и непатогенных бактерий:
(i) Без добавок среду можно использовать в качестве питательного агара (более богатая среда, чем питательный агар CM0003) или в качестве среды для краткосрочного поддержания исходных культур.
(ii) С добавлением сыворотки или других обогащений среда становится пригодной для культивирования многих требовательных организмов. Сыворотку и другие термолабильные добавки следует добавлять в стерилизованную среду, охлажденную до 45-50 °C.
(iii) При добавлении крови среда не только обогащается, но и становится пригодной для определения типичных гемолитических реакций, которые являются важными диагностическими критериями для стрептококков, стафилококков и других организмов. Для кровяного агара необходимо добавить 7% стерильной крови в стерилизованную среду, охлажденную до 45-50 ° C.
Основа кровяного агара использовалась при исследованиях Escherichia coli и других бактерий. Это была наиболее подходящая среда для исследования фагов Clostridium perfringens и в качестве основы селективной среды для Clostridium perfringens. Его использовали с добавлением фенолфталеинфосфата для обнаружения стафилококков, продуцирующих фосфатазу, и с добавлением соли и агара для оценки поверхностного загрязнения оборудования и туш свиней. Его использовали для определения диапазона солености роста морских флавобактерий.
Приготовление
Развести 40 г в 1 литре дистиллированной воды. Довести до кипения до полного растворения. Стерилизовать автоклавированием при 121 °C в течение 15 минут.
Для кровяного агара охладите основу до 50 °C и добавьте 7% дефибринированной лошадиной крови SR0050. Смешайте, осторожно вращая, и разлейте в чашки Петри или другие ёмкости.
Условия хранения и сроки годности
Храните обезвоженную среду при температуре 10-30 °C и используйте до истечения срока годности, указанного на этикетке.
Приготовленную среду хранить при температуре 2-8 °C.
Внешний вид
Сухая среда: сыпучий порошок соломенного цвета.
Готовая среда: гель соломенного цвета.
*Этот организм доступен в виде Culti-Loop.
Микробиология. Пищевая промышленность. Молочная промышленность. Мясная промышленность. Среда общего назначения.
Мы поможем вам подобрать и купить необходимое оборудование для лаборатории. Компания
«МИЛЛАБ» работает с производителями напрямую, потому у нас объективные цены на всю
продукцию и устройства!

Микробиологическое исследование крови производят при заболеваниях, связанных с проникновением микроорганизмов в ток крови. В норме кровь человека стерильна. В ток крови микробы попадают в результате осложнения при ряде заболеваний, при переливании крови и раз личных манипуляциях, когда развиваются сепсис, бактериемия, бактериальный шок. Исследование крови на содержание микроорганизмов следует проводить у больных с длительной неясной лихорадкой, особенно у людей с пониженной иммунологической реактивностью.

Септицемия и бактериемия могут быть вызваны практически всеми микроорганизмами -патогенными и условно патогенными. Среди грамположительных бактерий наиболее частыми возбудителями сепсиса являются Staph. aureus. Streptococcus группы D, Str. viridans, Str. pneumoniae. Среди грамотрицательных преобладают Е. coli, Klebs. pneumoniae, Ps. aeruginosa, Bacteroides fragilis. Из грибов чаще других встречается Candida albicans.

Взятие крови для исследования.

Кровь для посева следует брать до начала антибактериальной терапии или через определенный промежуток времени (8-10 ч) после введения лекарственного препарата, необходимый для его выведения из организма. Если посев крови производят во время антибактериальной терапии, рекомендуется добавлять в питательные среды вещества, нейтрализующие действие лекарственных препаратов. Так, при пенициллинотерапии с этой целью можно использовать пенициллиназу, при применении цефалоспоринов — цефалоспориназу, тетрациклинов —ионы магния, являющиеся антагонистами тетрациклина.

Кровь от больного для посева следует брать в начале озноба при подъеме температуры.

Кровь для посева берут из вены, строго соблюдая правила асептики. Для этого кожу на месте венопункции тщательно обрабатывают спиртом и йодом повторно. Шприцем, стерильным, набирают 10-15 мл крови (2-3 мл у маленьких детей), которую либо не посредственно у постели больного засевают в питательную среду, либо помещают в стерильную посуду, содержащую вещества, препятствующие свертыванию крови (0,3 % раствор цитрата натрия, 0,1 % оксалата натрия, 1 мл гепарина и др.). Материал быстро транспортируют в лабораторию, где производят дальнейшее исследование. Хранить кровь в холодильнике можно не более 1-2 ч, при более длительном хранении возможен лизис бактерий.

Однократный посев крови не всегда приводит к выделению гемокультуры. Более информативным является трехкратный посев крови с интервалами между посевами в сутки. У леченых больных кровь для посева следует брать 5-6 раз.

Оценка результатов микробиологического исследования крови зависит от вида выделенных микроорганизмов и массивности роста. Выделение патогенных видов с несомненностью свидетельствует об их этиологической роли в заболевании. В том случае, когда из крови выделены УПМ, следует учитывать их количественное содержание (выделение единичных клеток чаще свидетельствует о контаминации), наличие монокультуры или ассоциации (ассоциации чаще выделяются при загрязнении посева, однако у больных со сниженной иммунологи ческой реактивностью возможна смешанная инфекция), повторность выделения одной и той же

культуры от больного и идентичность гемокультуры с культурами, выделенными из другого материала от этого же больного.

Читайте также:  Декабрьский буст: достижение прибыли в 15 000 — пошаговое руководство

При окончательном заключении микробиолог должен сопоставить данные микробиологического исследования с клиникой заболевания и результатами других анализов.

Если через 10 дней после посева крови роста микробов на питательных средах не обнаружено, анализ можно считать отрицательным.

Среды для культивирования анаэробов.

1. Плотная питательная среда

типа КАБ: 1 г. твин 80, 2 г Na2HPO4, 1 г растворимого крахмала, 1 г гидрокарбоната натрия растворяют при подогревании в 60 мл дрожжевого аутолизата. Раствор фильтруют, добавляют к 940 мл растопленного мясо пептонного агара, хорошо перемешивают и автоклавируют в течение 20 мин при 0,5 атм. После фильтрации при бавляют 250 мг 1 цистеина гидрохлорида, 0,4 мл тиогликолевой кислоты и 6 г глюкозы; устанавливают рН 7,0—7,2, разливают в пробирки по 10 мл, стерилизуют при 0,5 атм 20 мин. Эту основу хранят в условиях холодильника. Перед использованием среду регенерируют 20 мин в кипящей водяной бане, быстро охлаждают до 50 °С, прибавляют 0,1 мл раствора гемина (50 мг гемина растворяют в 1 мл 1 н. NaOH, добавляют 100 мл дистиллированной воды, автоклавируют при 1 атм 15 мин); 1 мл лизированной двукратным замораживанием и оттаиванием цитратной крови донора перемешивают, выливают в чашку Петри, после застывания подсушивают 10-15 мин. Используют для посева или помещают для хранения в анаэробные условия при комнат ной температуре. Для придания среде селективных свойств перед разливом в чашки прибавляют один из следующих антибиотиков: 75 мкг/мл неомицина или канамицина, 50 мкг/мл гентамицина, 40 мкг/мл налидиксовой кислоты (невиграмон, неграм).

2. Жидкая питательная среда.

Ее основной состав и способ приготовления те же, что и для плотной среды. Однако вместо мясо пептонного агара используют мясо пептонный бульон (содержание агар агара в среде 0,6 г/л). Приготовленную основу разливают по 100-150 мл во флаконы и стерилизуют при 0,5 атм 20 мин, хранят в холодильнике. Перед использованием среду регенерируют 20 мин на кипящей водяной бане, быстро охлаждают до 50 °С, прибавляют 1 мл раствора гемина (на 100 мл среды), 10— 15 % по объему стерильной сыворотки крупного рогатого скота (можно использовать лошади ную сыворотку, стерильную асцитическую жидкость), разливают по 5 мл в пробирки и хранят в анаэробных условиях при комнатной температуре, выдержав предварительно микроанаэростаты со средой при 37 °С в течение 2 сут для контроля стерильности среды. Используется так же стандартная «Питательная среда для контроля стерильности сухая», к которой добавляют растворимый крахмал, твин 80, гемин в количествах и способом, как указано выше. Готовые к употреблению среды хранят также в анаэробных условиях.

3. Желточная анаэробная среда.

К 500 мл регенерированной плотной среды для анаэробов (основа), охлажденной до 60 °С, с соблюдением правил асептики прибавляют желток одного яйца (поверхность должна быть деконтаминирована погружением яйца на 1 ч в 96 % спирт; яйцо не должно содержать антибиотиков), перемешивают, разливают в чашки Петри. После застывания подсушивают, хранят в анаэробных условиях.

Фаготипирование

Испытуемую суточную
бульонную культуру засевают на поверхность
питательного агара в чашках Петри,
слегка подсушивают в термостате, затем
делят на квадранты, на которые пастеровской
пипеткой наносят по одной капле различных
типоспецифических фагов. После суточной
инкубации просматривают чашку, отмечая
те квадранты, в которых имеется лизис
бактерий. Фаготип бактериальной культуры
определяется тем типом фага, который
вызвал лизис.

Этот метод
широко используется для эпидемиологи-ческого
анализа и позволяет установить источник
инфицирования.

Схема постановки
опыта фаготипирования

Культуры стафилококка


ПО СРЕДУ

лизировалась
фагами 29, 77 и 80 –

Занятие №2. Мбд раневой анаэробной инфекции клостридиальной и неклостридиальной этиологии. План занятия.

1. Изучение
биологических свойств возбудителей
раневой анаэробной инфекции
клостридиальной и неклостридиальной
этиологии:

а) морфологических
(микроскопия готовых мазков из чистых
культур
клостридий
и бактероидов).

б) культуральных
(изучение демонстраций роста клостридий
и
бактероидов
на питательных средах).

в) биохимической
активности (изучение демонстраций).


разбор этапов исследования.


ускоренные методы диагностики.

Этиологическая
структура инфекций, вызванных облигатными
анаэробами (спорообразующими и
неспорообразующими). Особенности
морфологических, культуральных,
биохимических свойств клостридий и
бактероидов. Факторы патогенности
возбудителей анаэробной инфекции и их
значение в патогенезе инфекционного
процесса (токсины, ферменты патогенности,
капсулообразование).

Принципы
лабораторной диагностики раневых
инфекций, вызванных спорообразующими
и неспорообразующими облигатными
анаэробами: применяемые методы,
особенности забора материала, его
транспортировки, способы создания
бескислородных условий, особенности
культивирования облигатных анаэробов.

Специфическая
профилактика и терапия раневой анаэробной
инфекции и столбняка.

Методические рекомендации для преподавателей.

Преподаватель
обсуждает со студентами
теоретический материал по теме занятия,
сопровождая его решением ситуационных
задач по разделу «Раневые,
гнойно-воспалительные, гнойно-септические
инфекции» (см. методическое пособие, с.
106) – 60 мин.

Следует
остановиться на биологических свойствах
облигатных анаэробов (спорообразующих
и неспорообразующих) – возбудителей
раневых инфекций, разобрать схему
выделения чистой культуры облигатных
неспорообразующих анаэробов, особенностях
микробиологической диагностики раневой
анаэробной инфекции и столбняка.

Обратить
внимание студентов на особенности
специфической профилактики и лечения
столбняка и газовой гангрены.

После
перерыва студенты приступают к
самостоятельной работе – 65 мин.

В
конце занятия студенты приводят в
порядок рабочие места и проводят влажную
уборку помещения – 10 мин.

Читайте также:  Новые пособия в декабре детям

1. Промикроскопировать
готовые мазки из чистых культур клостридий
и
бактероидов (окраска по Граму).

Микроскопические
картины зарисовать и описать в альбоме.

2. Изучить
демонстрации роста клостридий и
бактероидов на питательных
средах:


среда Вильсон-Блер (выделение
сульфитредуцирующих клостридий)


КАБ (кровяной агар для бактероидов).

3.
Изучение дифференциальных признаков
по системе API
20-A.

Выделить
главные отличительные признаки клостридий
и бактероидов.

Описать
биохимические тесты, используемые в
системе API
20 – А для идентификации клостридий и
бактероидов до видов.

4.
Составить схему микробиологической
диагностики раневых инфекций, вызванных
неспорообразующими облигатными
анаэробами:

Биопрепараты,
применяемые для диагностики, профилактики
и терапии

раневой
анаэробной инфекции и столбняка. _____________

Название
препарата Состав
Способ
получения Применение

CI.
perfringens -10 шт.

Bacteroides
– 10 шт.

транспортная
среда – 1 пробирка

среда
Вильсон – Блер – 1 пробирка

среда
КАБ – 1 чашка

Домашнее задание.

Итоговая
контрольная работа по разделу «Раневые,
гнойно-воспалительные и гнойно-септические
инфекции».

Современная классификация бактероидов

Семейство:
Bacteroidaceae

(включает
сахаролитические виды кишечных
бактероидов)

.
gingivalis
вызывают парадонтозы

Схема выделения
и идентификации облигатных анаэробов

Забор материала:
шприцем с плотно притертым поршнем
(удалить воздух).

Транспортировка
материала:
в пробирке, герметично закрытой резиновой
пробкой, с транспортной средой.

Предварительный
этап
(проводится не всегда):
посев материала на жидкую среду
обогащения, например, тиогликолевую с
резазурином, и анаэробная инкубация.

1 этап:
рассев материала (или со среды обогащения)
на плотные питательные среды для
получения изолированных колоний в
анаэробных условиях (анаэробный бокс),
анаэробная инкубация 24-72 часа при 370С
(анаэростат, анаэробный бокс).

2 этап:
макро- и микроскопическое изучение
выросших колоний. Параллельный рассев
изолированных колоний на 2 чашки с
питательной средой для аэробной и
анаэробной инкубации при 370С
на 24-48 часов. Для облигатных анаэробов
обязательно отсутствие роста в аэробных
условиях.

3 этап:
идентификация выделенной чистой культуры
возбудителя. Ферментативная активность
может быть оценена с помощью
дифференциально-диагностической системы
API-20А.

Вывод:
указывается родовая и видовая
принадлежность выделенной культуры.

Состав питательных сред

Сердечно-мозговой
бульон – 100мл

D-глюкоза
— 0,5 г

Цистеин
— 0,5 г

Пробирка заполняется
средой на 2/3 объема, свободный объем
заполняется смесью пропана и СО2.

Среда КАБ
(кровяной агар для бактероидов):

Вода
дистиллированная — 1000 мл

Пептон
10 г

Дрожжевой
экстракт 5 г

Глюкоза
10 г

Цистеин
0,25 г

NaCl
3 г

Na2HPO4
2 г

Гемин
1 г

Кровь
30 мл

Агар
20г

Неомицин
200 ед./100 мл среды

Основные методы микробиологического исследования

Для
обнаружения возбудителя материал от
больных, бактерионосителей или из
объектов внешней среды (например: кровь,
гной, мокрота, испражнения, вода, пищевые
продукты и т.п.) исследуют следующими
методами:

А)
Бактериоскопический
(микроскопический) метод,
при котором из исследуемого материала
приготавливают микропрепараты и изучают
их в окрашенном виде в световом микроскопе;
применяют также фазово-контрастную и
люминисцентную микроскопию.
Бактериоскопический метод простой,
быстрый, но обычно дает только
предварительный ответ, может быть
использован не при всех инфекциях. Но
при некоторых заболеваниях позволяет
ставить и окончательный диагноз
(например, при спирохетозах и др.).

Б)
Бактериологический
метод,
при котором исследуемый материал
засевают на питательные среды с целью
выделения чистой культуры возбудителя
заболевания. Полученную культуру
идентифицируют, т.е. подвергают тщательному
изучению для определения ее видовой
(иногда типовой) принадлежности.
Бактериологический метод позволяет
поставить окончательный диагноз, он
является ведущим методом при диагностике
многих инфекционных заболеваний.
Основные недостатки – трудоемкость и
длительность: обычно ответ получают на
4-5 день, а при некоторых заболеваниях и
позже, например, при туберкулезе – через
месяц и более.

В)
Биологический
метод,
при котором исследуемым материалом
заражают восприимчивых животных с тем,
чтобы у инфицированного животного
обнаружить и выделить возбудителя,
пользуясь для этой цели бактериологическим
и бактериоскопическим методами, или
выявить на животных присутствие токсина
(биологическая проба). Биологический
метод, как правило, применяют в том
случае, когда не удается поставить
микробиологический диагноз другими
способами.

Г)
Экспресс-методы
(быстрой диагностики) основаны на
обнаружении возбудителя в пробах, взятых
от больного, которые позволяют дать
ответ через несколько часов.

Возбудитель
может быть выявлен в пораженных тканях
с помощью флюоресцирующих антител. Это
прямой и непрямой ИФ.

Антиген
может быть обнаружен в материале от
больного и другим способом, при помощи
твердофазного иммунологического
анализа, в серологических реакциях на
твердой основе. В зависимости от маркера,
который используется для метки антигенов
или антител, эти реакции разделены на
РИА (с использованием радиоактивных
маркеров) и ИФА (ферментов). Методы
просты, доступны, являются
высокочувствительными и сочетают
наглядность микроскопического метода
со специфичностью серологического.

Серологический
метод
применяется для обнаружения антител
или антигенов в организме больного или
других обследуемых лиц.

Серологический
метод заключается в постановке различных
реакций иммунитета (реакции агглютинации,
непрямой гемагглютинации, реакции
связывания комплемента, преципитации
и др.).

Обычно
серологическое исследование проводится
для обнаружения антител в исследуемой
сыворотке с помощью известных антигенов
– диагностикумов. Реже в исследуемых
материалах (крови, моче, спинномозговой
жидкости и др.) определяют антиген,
пользуясь для этой цели диагностическими
сыворотками с известными антителами.
Серологический метод широко применяется,
так как сравнительно прост, дает
ускоренный ответ (в течение суток) и
отличается специфичностью.

Аллергический
метод
применяется для выявления состояния
инфекционной аллергии. Метод заключается
в постановке кожных аллергических проб
со специфическими антигенами (аллергенами),
приготовленными из возбудителей
заболевания. При положительной кожной
пробе на месте введения возникает
гиперемия, припухлость, что может
указывать на наличие инфекции. Кожные
аллергические пробы ставятся при
туберкулезе, бруцеллезе, туляремии и
ряде других заболеваний.

Читайте также:  Мгновенный доступ к номеру телефона инициатора онлайн

Молекулярно-генетический
метод
исследования позволяет обнаружить в
клиническом материале специфические
фрагменты ДНК или РНК возбудителя
посредством молекулярной гибридизации
или полимеразной цепной реакции (ПЦР).

ПЦР
– молекулярно-генетический экспресс-метод
исследования, позволяющий выявить
присутствие в клиническом материале
даже минимального количества специфических
фрагментов ДНК или РНК с определенной
нуклеотидной последовательностью и
тем самым диагностировать природу
инфекции. По своей чувствительности
ПЦР далеко превосходит все остальные
методы диагностики инфекционных
заболеваний.

Кровяной анаэробный бактоагар с канамицином и желчью

эритрит-агар – 36,0 г

крахмал растворимый – 1,0 г

аммоний сернокислый – 0,4 г

натрий углекислый кислый – 1,0 г

гемин (1% раствор) – 1 мл

твин-80 – 1 мл

вода дистиллированная – 1000 мл

дрожжевой экстракт – 5, 0 г

желчь сухая – 20, 0 г

Компоненты растворить при нагревании, установить рН 7,2, профильтровать через ватный тампон, разлить во флаконы, автоклавировать при 1 атм. 20 минут.

Перед употреблением среду растопить, охладить до 50оС, добавить 5% лизированной двукратным замораживанием и оттаиванием цитратной крови донора и витамин К1 из расчета 0,1 мл 1% раствора на 100мл среды, и канамицин из расчета 1 мг/мл (бактероиды обладают природной устойчивостью к аминогликозидам и желчи). Перемешать, разлить в чашки Петри. После застывания подсушить 10-15 мин.

Свежеразлитую (в течение 2 ч после приготовления) или прередуцированную, т.е. выдержанную в течение суток в анаэростате, среду используют для первичного выделения бактероидов группы B.fragilis, субкультивирования, определения чувствительности к антибактериальным препаратам.

Среда для бактероидов Хенеля-NH – неомицин-агар

Среда NH –основная

Пептон – 10, 0г

Натрия хлорид – 3, 0 г

Na2HPO4*2H2O – 2, 0г

Мясной экстракт – 3, 0 (30, 0 мл мясной воды)

Дрожжевой экстракт – 4, 0 г (40 мл)

Декстроза – 6, 0 г

Агар-агар – 20, 0 г

Твин-80 – 1, 0 мл

Цистин – 0, 25 г

Дистиллированная вода –до 1000 мл

рН 6, 8 – 7, 0

стерилизация 0, 5 атм.30 минут.

Перед розливом в чашки к основному агару добавляют неомицина или неовитина – 0, 08 г, дезоксихолата натрия – 0, 2г, крови 30 мл или эритроцитарной массы – 20 мл.

Обогащенная питательная среда для контроля стерильности с канамицином и желчью.

Канамицин добавить в среду из расчета 1 мг/мл. для этого 1 г канамицина растворяют в 10 мл дистиллированной воды. Весь объем раствора канамицина и 20 г сухой желчи добавляют к 1 л среды до стерилизации.

Среда может быть использована для селективного выделения бактероидов группы B.fragilis/

Кровяной агар для бактероидов (КАБ)

Цитратная кровь человека – 7% (70 мл)

Дрожжевой аутолизат – 6% (60 мл)

Глюкоза – 0, 6% (6, 0 г)

Na2HPO4*2H2O – 0, 2% (2, 0г)

Твин -80 – 0, 1% (1 мл)

Na2SO3 – 0, 05% (0, 5 г)

Тиогликолевая кислота – 0, 04% (0, 4 мл)

Цистеин – 0, 025% (250 мг)

МПА расплавленный – 86% (869 мл)

Среду готовят на мясо-пептонном агаре (МПА). 2 г Na2HPO4*2H2O и 1 г твина-80 растворяют при подогревании в 60 мл дрожжевого аутолизата. После фильтрации добавляют смесь к 860 мл МПА. Стерилизуют при 0, 5 атм. 20 минут

После фильтрации добавляют 250 мг цистеина, 0, 04 мл тиогликолевой кислоты и 6 г глюкозы. Устанавливают рН 7, 0, разливают в проьирки по 10 мл. стерилизуют при 0, 5 атм.20 минут. Перед посевлом среду расплавляют на водяной бане, и после охлаждения (до 60°С) прибавляют в каждую пробирку по 0, 2 мл 2, 5% раствора Na2SO3 9приготовленный заранее на стерильной дистиллированной воде) и 0, 7 мл цитратной крови человека (без анотибиотиков).

Питательная среда для контроля стерильности готовится по прописи.

Среда Кармали рекомендуется для выделения Campylobacter jejuni и Campylobacter coli из клинических образцов. Исходная среда Campylobacter Blood Free содержит в составе агара пируват натрия. Campylobacter Medium (Karmali) включает этот ингредиент в селективную добавку.

Исходная среда также содержит дезоксихолат натрия для ингибирования грамположительных организмов, тогда как в среде Campylobacter (Karmali) подавление грамположительных организмов достигается за счёт включения ванкомицина.

Модифицированная селективная добавка Кармали SR0205 является альтернативной, вместо циклогексимида используется амфотерицин B в качестве противогрибкового агента.

Штаммы Campylobacter jejuni образуют серые, влажные, плоские колонии после 42-часовой инкубации при 42 °C.

Приготовление

Добавьте 21,5 г основы агара Campylobacter Agar Base (Кармали) в 500 мл дистиллированной воды и доведите до кипения для растворения. Стерилизовать автоклавированием при 121 °C в течение 15 минут. Остудить до 50 °C.

С соблюдением правил асептики добавьте 1 флакон селективной добавки Campylobacter (Кармали) или модифицированной селективной добавки Кармали, приготовленных в соответствии с указаниями. Хорошо перемешать и разлить по стерильным чашкам Петри.

Методика

Основу агара Кармали следует хранить в плотно закрытом оригинальном контейнере в прохладном сухом месте вдали от яркого света. При хранении при 10-30 °C среда остаётся стабильной до истечения срока годности, указанного на этикетке.

Внешний вид

Сухая среда: сыпучий порошок чёрного цвета.

Готовая среда: гель чёрного цвета.

Оцените статью